Determinar in vitro la estabilidad físico-química de oxaliplatino y doxorrubicina en las condiciones de hipertermia utilizadas in vivo durante el tratamiento de pacientes con carcinomatosis peritoneal, tras cirugía citorreductora.
MétodosSe prepararon tres disoluciones: A (oxaliplatino 200 mg/L), B (doxorrubicina 15 mg/L) y C (oxaliplatino 200 mg/L + doxorrubicina 15 mg/L) en glucosa al 5%. Las tres disoluciones se sometieron a la temperatura máxima alcanzada in vivo (49° C) durante dos horas. La estabilidad física se centró en el control visual de partículas y/o precipitados en las disoluciones, el desprendimiento de gases, olor y color. Para controlar la estabilidad química, se extrajeron muestras cada 15 minutos desde el inicio del estudio y se determinó la concentración remanente de oxaliplatino y doxorrubicina en las mismas. Las concentraciones de oxaliplatino se determinaron por absorción atómica con cámara de grafito mientras que doxorrubicina se determinó mediante cromatografía líquida de alta resolución. Como criterio de estabilidad química se seleccionó el establecido en la Farmacopea Americana que establece un margen de variación permitido entre el 90-110% de la concentración inicial.
ResultadosDurante el tiempo de ensayo, no se observó la aparición de partículas o precipitados, ni el desprendimiento de gases o cambios de color en las disoluciones. Las muestras analizadas presentaron una concentración remanente de oxaliplatino y doxorrubicina dentro del límite de 90110%. La estabilidad de las muestras sometidas a dos ciclos de congelación-descongelación tras la hipertermia también se encontró dentro de los límites especificados.
ConclusionesLas disoluciones A, B y C en glucosa al 5%, son estables física y químicamente a 49° C, durante dos horas. En estas condiciones, podrían ser utilizadas con garantías de estabilidad en pacientes con carcinomatosis peritoneal subsidiarios de recibir quimioterapia intraperitoneal con hipertermia basada en estos agentes antineoplásicos.
To evaluate the in vitro physicochemical stability of oxaliplatin and doxorubicin when the in vivo hyperthermic intraperitoneal conditions are reproduced.
MethodsThree solutions were prepared, A (oxaliplatin 200 mg/L), B (doxorubicin 15 mg/L) and C (oxaliplatin 200 mg/L with doxorubicin 15 mg/L) in glucose 5%. The three solutions were subjected to the maximum temperature reached in vivo (49° C) for two hours. Physical stability was focused on visual control of particles or precipitates in solutions, discharge of gases, odor and color. Samples were taken every 15 minutes and the chemical stability was evaluated by determining the concentration of oxaliplatin and doxorubicin remaining in the samples. Oxaliplatin concentrations were determined by atomic absorption graphite chamber while doxorubicin was determined by high performance liquid chromatography. The chemical stability criteria selected was the one described by the American Pharmacopoeia, which sets a permissible variation range between the 90-110% of the initial concentration.
ResultsDuring the assay there was no appearance of particles, precipitates in the samples, discharge of gases, nor colour changes in the solutions. The samples showed a remaining concentration of oxaliplatin and doxorubicin within the 90-110% limit. The stability of the samples that follow to two cycles of freeze-thaw after hyperthermia was also found within the specified limits.
ConclusionA, B and c solutions in 5% glucose, are physically and chemically stable at 49° C for two hours. Under these conditions, these solutions could be used with guarantees of stability in patients with peritoneal carcinomatosis subsidiary of intraperitoneal hyperthermic chemotherapy based in these antineoplastic agents.
Oxaliplatino es un fármaco antineoplásico que ejerce su acción al unirse de forma covalente a la doble hélice de ADN de forma que inhibe su síntesis y transcripción1. En España está indicado para el tratamiento de primera línea del cáncer colorrectal metastásico, en asociación con 5-fluorouracilo y leucovorin, y en otros tipo de tumores sólidos1. Oxaliplatino también se ha utilizado en el tratamiento de la carcinomatosis peritoneal en pacientes sometidos a cirugía citorreductora y quimioterapia intraperitoneal con hipertermia (HIPEC)2,3. Oxaliplatino se presenta como concentrado para solución para perfusión en viales de 50, 100 y 200 mg de 10, 20 y 40 mL, respectivamente. Estudios publicados muestran que el oxaliplatino es estable al menos durante 4 horas expuesto a una temperatura de 46° C en solución de glucosa al 5%5. Oxaliplatino es estable en envases de vidrio, cloruro de polivinilo, prolipropileno, polietileno y poliolefina, no presentando adsorción a estos tipos de materiales1. Aunque en la Ficha Técnica del oxaliplatino se especifica que no se debe congelar4, diversos estudios muestran que el oxaliplatino diluido es estable tras dos ciclos de congelación-descongelación6.
Otro fármaco utilizado en los regimenes de HIPEC para el tratamiento de la carcinomatosis peritoneal es doxorrubicina7–11, antraciclina de amplio espectro aprobada en España para el tratamiento de diversos tumores hematológicos y sólidos1. La presentación comercializada en España para la administración parenteral es en forma de polvo de color rojo para solución inyectable y de solución para perfusión. Según su ficha técnica, los viales de doxorrubicina hidrocloruro en polvo se deben reconstituir en cloruro sódico al 0,9% o en agua para inyección hasta una concentración de 2 mg/mL12. Doxorrubicina, una vez reconstituida, es estable a 35° C durante, al menos, 14 días en envases de etienovinilacetato13. Sin embargo, se han evidenciado pérdidas del 26% cuando doxorrubicina se somete a una temperatura de 100° C durante una hora14. Además, hasta un 10% de la dosis de doxorubicina puede adsorberse a los envases de vidrio1. A pesar de que el fabricante recomienda no congelar las soluciones de doxorrubicina, Hoffman y cols.15 han evidenciado que tras congelar la disolución de doxorrubicina a -20° C, durante al menos 30 días, no se produce degradación.
Existe limitada información sobre la estabilidad de oxaliplatino y doxorrubicina tras su administración conjunta por vía intraperitoneal con hipertermia y, por ello, el objetivo del presente estudio ha sido evaluar la estabilidad físicoquímica de las disoluciones de oxaliplatino y doxorrubicina en glucosa al 5% cuando se administran en monoterapia o combinadas. En este estudio, se ha reproducido in vitro las condiciones de concentración y temperatura que se dan en HIPEC. Asimismo, se ha evaluado la estabilidad de las disoluciones de oxaliplatino y doxorrubicina tras ser sometidas a dos ciclos de congelación-descongelación posteriores a la hipertermia.
MétodosReactivosComo productos de ensayo se ha empleado oxaliplatino (Eloxatin® 5 mg/mL, Sanofi-Aventis S.A.) y doxorrubicina (Doxorrubicina Ferrer Farma® 10 mg, Ferrer Grupo). Como vehículo para la preparación de las disoluciones se ha utilizado glucosa al 5% (Viaflo, Baxter®). Otros reactivos utilizados han sido daunorrubicina (Daunoblastina® 20mg, Kenfarma), dihidrogenofosfato potásico (Panreac Química S.A.), ácido ortofosfórico 85% (Panreac Química S.A.), acido nítrico 65% (Prolabo®), acetonitrilo e isopropanol, ambos de calidad HPLC (Panreac Química S.A.). El agua ultrapura, también con calidad HPLC, se ha obtenido mediante el sistema Milli Q (Equipo Milli Q Gradient A10, Millipore®).
Equipos empleados en el estudioEl estudio se ha realizado en un baño termostatizado JP Selecta modelo 6000138 a 49°C, temperatura más alta alcanzada in vivo, situado en el interior de una cabina de gases CRUMA modelo 1010.
Para el análisis de las muestras de oxaliplatino se ha empleado un espectrofotómetro de absorción atómica Agilent® serie 240Z equipado con un dispensador de muestras automático (PSD 120) y una cámara de atomización con tubo de grafito (GTA 120). Para el análisis de las muestras de doxorrubicina se ha empleado un sistema de cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) Agilent® serie 1200 equipado con un desgasificador (mod. G1233A), bomba cuaternaria (mod. G1354A), inyector automático (mod. G1329A), componente termostatizado para columna (mod. G1316A), detector de fluorescencia de múltiple longitud de onda (mod. G1321A) y sistema automático de adquisición y procesamiento de datos cromatográficos ChemStation® (versión B.02.01).
Disoluciones de ensayoSe han preparado tres disoluciones de ensayo en glucosa al 5%; la disolución A que contiene oxaliplatino a una concentración de 200 mg/L, la disolución B que contiene doxorrubicina a una concentración de 15 mg/L y una disolución C que contiene oxaliplatino 200 mg/L junto con doxorrubicina 15 mg/L.
Diseño del estudio de estabilidadPara evaluar la estabilidad física cada día de estudio se ha realizado un control visual de partículas y/o precipitados en las disoluciones preparadas y conservadas a -80° C. Asimismo, se ha evaluado visualmente el desprendimiento de gases en las muestras, así como las características organolépticas olor y color.
El estudio de estabilidad química se ha realizado, para cada disolución, en tres días diferentes. Todas las disoluciones han sido extemporáneas y se han depositado en recipientes de vidrio topacio que se han sumergido en un baño termostatizado a temperatura de 49° C durante dos horas. Antes del inicio del estudio, se ha tomado una muestra a temperatura ambiente y posteriormente, una vez atemperada la disolución a 49° C, se han tomado muestras a los tiempos 0, 15, 30, 45, 60, 75, 90 y 120 minutos.
Adicionalmente, se ha evaluado la estabilidad para cada una de las disoluciones, tras dos procesos de congelación-descongelación posteriores a la hipertermia con objeto de establecer la estabilidad de las muestras extraídas en estudios in vivo y congeladas hasta su posterior valoración. Para ello, el primer día de estudio se ha tomado una muestra adicional a cada uno de los tiempos de muestreo descritos y se han conservado a -80° C durante 15 días. Transcurrido ese tiempo, las muestras se han descongelado a temperatura ambiente y se ha tomado el volumen necesario de cada muestra para proceder a su bioanálisis. El volumen de muestra restante ha sido de nuevo congelado durante otros 15 días para evaluar la estabilidad tras un segundo ciclo de congelación-descongelación.
BioanálisisLa cuantificación de la concentración de oxaliplatino se ha realizado mediante espectroscopia de absorción atómica con cámara de grafito mientras que la de doxorrubicina16 se ha realizado mediante HPLC acoplada a detección de fluorescencia. Ambas técnicas analíticas han sido previamente validadas según las directrices de la FDA17 y EMA18, en un ámbito de concentraciones de 0.03 a 3 mg/L para oxaliplatino y de 1 a 900 ng/mL para doxorrubicina16. Los parámetros de validación han incluído estudios de linealidad, exactitud y precisión intradía e interdía, límite de cuantificación, selectividad y recuperación de la técnica.
Puesto que las disoluciones de oxaliplatino (A y C) se prepararon a una concentración de 200 mg/L, superior al patrón de mayor concentración de la técnica analítica, se realizó una dilución 1/1.000 (v/v) de cada muestra antes de su bioanálisis. Para ello, se tomaron 10 mL de las muestras y se adicionaron 9.990 mL de la ácido nítrico 0,65%. Así, la concentración final de la muestra basal y del resto de muestras, resultaría ser aproximadamente 0,20 mg/L y estarían incluidas en el ámbito de linealidad de la técnica analítica (0,03 a 3 mg/L).
En el caso de las disoluciones de doxorrubicina (B y C), también la concentración de 15 mg/L fue superior al patrón de mayor concentración de la técnica analítica validada y, en este caso, la dilución utilizada en las muestras fue 1/20 (v/v). Para ello se tomaron 45 mL de las muestras, se adicionaron 90 mL de la solución madre de patrón interno y 765 mL de hidrógeno fosfato potásico 0,05 M a pH 3,55. De esta forma, la concentración final de la muestra basal y del resto de las muestras resultaría ser aproximadamente 750 ng/mL y estarían incluidas en el ámbito de linealidad de la técnica analítica de doxorrubicina (1 a 900 ng/mL).
Análisis de datosCada día del estudio se realizaron rectas de calibración con cuatro patrones de concentración conocida, de forma que, mediante interpolación de las señales analíticas obtenidas en las muestras, se pudo determinar la concentración de fármaco en las mismas. La estimación de la ordenada en el origen y la pendiente de las rectas de calibrado se ha realizado por mínimos cuadrados ponderados, utilizando la inversa del cuadrado de la variable dependiente como función de ponderación. Posteriormente, estos resultados se han corregido por el factor de dilución aplicado para determinar el valor de concentración real de los fármacos en las muestras.
El porcentaje de concentración remanente de oxaliplatino y doxorrubicina en cada muestra se ha determinado considerando que los resultados obtenidos en la muestra basal, obtenida antes del inicio del estudio, equivalen al 100% de la concentración estudiada en cada caso. El porcentaje de concentración remanente en cada muestra se ha calculado como media de los tres valores obtenidos al analizar las muestras por triplicado.
Para estudios de estabilidad química de distintas formas farmacéuticas, la Farmacopea Americana establece que el margen de variación permitido es entre el 90110% de la concentración inicial18. Estos valores han sido utilizados como valores de referencia por otros autores en estudios de estabilidad previamente publicados20,21. Por analogía con la estabilidad exigida en las formas farmacéuticas, y en ausencia de normativa específica para estudios de estabilidad en mezclas binarias, se ha establecido como criterio de aceptación que la concentración remanente de oxaliplatino y doxorrubicina en las muestras esté dentro de los límites de 90-110% de la concentración inicial.
Análisis estadísticoEl efecto del tiempo transcurrido desde la preparación de la muestra, el día del ensayo, los ciclos de congelación-descongelación y la presencia de medicación concomitante sobre el porcentaje de concentración remanente del fármaco se evaluó mediante un modelo de regresión lineal múltiple. Se determinaron los coeficientes del modelo de regresión de manera que se minimizara la suma de residuales al cuadrado. Con el fin de controlar las 12 comparaciones múltiples realizadas, se asumió un valor de p inferior a 0,004 (aproximadamente, 0,05/12) para concluir la significación estadística.
ResultadosEn el estudio de estabilidad física de oxaliplatino y doxorrubicina en las disoluciones de ensayo, no se ha detectado la presencia de ningúna partícula o precipitado en las soluciones preparadas después de permanecer dos horas en condiciones de hipertermia ni tras ser sometidas a dos ciclos de congelación-descongelación. Asimismo, no se ha observado desprendimiento de gases ni cambio de coloración en ninguna de las muestras.
Con respecto a la estabilidad química, los resultados de las curvas de calibrado para las técnicas analíticas obtenidas cada día de estudio se muestran en la tabla 1. El coeficiente de correlación (r) ha sido superior a 0.997 en todos los casos.
Parámetros de las rectas de calibración en cada día del estudio de estabilidad
| Estudio | Doxorrubicina | Oxaliplatino | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|
| Ordenada en origen (E.E.R.) | Pendiente (E.E.R.) | r | Ordenada en origen (E.E.R.) | Pendiente (E.E.R.) | r | |
| Día 1 | 7,6·10-1 (7,5·10-2) | 1,6·10-2 (1.0·10-4) | 0,999 | 1,4·10-2 (3,0·10-4) | 10,0·10-1 (5,4·10-3) | 0,999 |
| Día 2 | 2,9·IG-1 (1,6·10-1) | 1,7·10-2 (3.0·10-4) | 0,999 | 4,9·10-3 (2,0·10-4) | 9,2·10’1 (4,3·10-3) | 0,999 |
| Día 3 | 8,0·10-1 (2,6·10-1) | 1,6·10-2 (5.0·10-4) | 0,998 | 1,1·10-2 (4,0·10-4) | 6,3·10-1 (6,1·10-3) | 0,999 |
| 1er ciclo congelación-descongelación | 8,1·10 -1(3,1·10-1 | 1,9·10-2 (6.0·10-4) | 0,999 | 1,3·10-2 (2,6·10-3) | 8,2·10-1 (4,5·10-2) | 0,999 |
| 2° ciclo congelación-descongelación | 10.4·10-1 (1,9·10-1) | 1,8·10-2 (4.0·10-4) | 0,999 | 1,3·10-2 (2,4·10-3) | 9,9·10-1 (4,2·10-2) | 0,999 |
E.E.R: error estándar relativo; r: coeficiente de correlación.
En la tabla 2 se detalla el porcentaje medio de oxaliplatino remanente y su desviación estándar para cada tiempo de muestreo, día de estudio y ciclo de congelación-descongelación, en ausencia y presencia de doxorrubicina, respectivamente. Los datos de porcentaje de concentración de oxaliplatino remanente en estas condiciones han oscilado desde un 94% hasta un 107%. En la tabla 3 se presentan los parámetros, error estándar, significación estadística e intervalos de confianza del 95% del modelo de regresión multivariante de oxaliplatino. Estos datos revelan que los factores tiempo transcurrido desde la preparación de la muestra, el día del ensayo, los ciclos de congelación-descongelación o la presencia de doxorubicina no modifican el porcentaje de concentración remanente de oxaliplatino de forma significativa. La figura 1A muestra la evolución temporal de la concentración de oxaliplatino respecto al tiempo, en ausencia y presencia de doxorrubicina.
Porcentaje medio de concentración remanente de oxaliplatino 200 mg/L (rango), en presencia o ausencia de doxorrubicina 15 mg/L
| Tiempo (minutos) | Estudio de estabilidad | Estudio de congelación-descongelación | Presencia doxorrubicina | |||
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1erdía | 2° día | 3erdía | 1erciclo | 2° ciclo | ||
| 0 | 101,5 (101,4-101,7) | 102,2 (100,2-105,0) | 97,1 (96,3-98,0) | 106,8 (103,0-110,0) | 103,7 (102,2-106,4) | |
| 15 | 100,3 (99,7-100,9) | 102,7 (100,5-104,1) | 97,9 (92,7-104,5) | 100,1 (100,1-103,9) | 99,8 (96,4-103,7) | |
| 30 | 100,6 (100,4-100,7) | 98,4 (97,5-99,0) | 95,8 (95,2-16,9) | 96,6 (95,2-98,0) | 105,5 (105,0-105,9) | |
| 45 | 101,8(101,2-102,4) | 102,3 (100,1-103,5) | 101,4 (99,6-104,2) | 97,4(96,1-98,6) | 96,3 (94,1-98,9) | No |
| 60 | 99,9 (98,2-101,6) | 98,6 (97,3-99,7) | 101,0 (98,1-103,2) | 99,5 (98,7-100,4) | 98,4 (96,1-101,1) | |
| 75 | 100,9 (99,6-102,2) | 100,8 (99,0-104,3) | 100,5 (98,5-101,7) | 98,9 (97,9-99,9) | 99,0 (96,4-102,0) | |
| 90 | 96,8 (95,9-97,7) | 96,6 (96,4-96,8) | 103,3 (102,8-103,5) | 102,8 (99,5-106,2) | 97,9 (96,4-99,8) | |
| 120 | 98,4 (97,9-98,8) | 98,8 (97,8-100,7) | 104,2 (102,7-105,3) | 97,8 (94,1-101,6) | 99,4 (99,0-99,9) | |
| 0 | 102,2 (102,2-102,3) | 95,0 (94,5-95,8) | 100,3 (98,2-104,3) | 96,9 (95,6-98,2) | 97,5 (95,8-99,2) | |
| 15 | 96,9 (95,2-98,5) | 98,5 (95,8-101,8) | 94,4 (93,5-95,4) | 103,2 (102,7-103,7) | 101,4 (100,6-102,3) | |
| 30 | 102,2 (101,4-103,0) | 100,8 (97,3-102,7) | 95,0 (93,9-95,5) | 102,3 (100,8-103,9) | 100,5 (99,0-102,0) | |
| 45 | 100,5 (100,3-100,8) | 102,0 (100,8-102,7) | 96,6 (95,1-97,3) | 100,7 (95,6-105,7) | 98,6 (97,0-100,1) | Sí |
| 60 | 100,1 (99,2-101,0) | 102,8 (101,0-104,3) | 99,5(97,3-101,7) | 100,3 (98,2-102,4) | 99,7 (99,2-100,2) | |
| 75 | 99,0 (98,3-99,8) | 102,5 (100,2-104,1) | 106,4 (104,8-108,8) | 99,5 (99,3-99,8) | 99,8 (99,1-100,5) | |
| 90 | 102,0 (101,8-102,2) | 100,4 (97,5-102,8) | 105,2 (104,3-106,3) | 99,3 (95,9-102,7) | 99,3 (98,2-100,3) | |
| 120 | 97,4 (96,6-98,1) | 98,6 (96,3-100,3) | 104,4 (100,6-106,5) | 97,8 (97,3-98,3) | 103,3 (100,3-106,2) | |
Parámetros e intervalos de confianza del 95% del modelo de regresión multivariante de oxaliplatino
| Parámetros | Coeficiente | Error estándar | P | Intervalo de confianza 95% | |
|---|---|---|---|---|---|
| Límite inferior | Límite superior | ||||
| Constante | 100,3 | 0,739 | 0,000 | 98,9 | 101,8 |
| t = 15 min | -0,838 | 0,820 | 0,308 | -2,453 | 0,777 |
| t = 30 min | -0,588 | 0,820 | 0,474 | -2,203 | 1,028 |
| t = 45 min | -0,594 | 0,820 | 0,470 | -2,209 | 1,022 |
| t = 60 min | -0,379 | 0,820 | 0,644 | -1,994 | 1,236 |
| t = 75 min | 0,390 | 0,820 | 0,635 | -1,226 | 2,005 |
| t = 90 min | 0,008 | 0,820 | 0,993 | -1,608 | 1,623 |
| t = 120 min | -0,345 | 0,820 | 0,674 | -1,960 | 1,270 |
| Ensayo día 2 | 0,041 | 0,648 | 0,949 | -1,236 | 1,318 |
| Ensayo día 3 | 0,136 | 0,648 | 0,834 | -1,141 | 1,413 |
| Ciclo congelación 1 | -0,037 | 0,648 | 0,954 | -1,314 | 1,239 |
| Ciclo congelación 2 | -0,037 | 0,648 | 0,954 | -1,314 | 1,239 |
| Doxorubicina | 0,027 | 0,410 | 0,947 | -0,780 | 0,835 |
Evolución temporal de las concentraciones de oxaliplatino, en ausencia y presencia de doxorrubicina (1A) y evolución temporal de las concentraciones de doxorrubicina, en ausencia y presencia de oxaliplatino (1B). Las líneas discontinuas representan los valores del 90% y 110% de la concentración basal en cada caso.
En la tabla 4 se detalla el porcentaje medio de doxorrubicina remanente y su desviación estándar para cada tiempo de muestreo, día de estudio y ciclo de congelación-descongelación, en ausencia y presencia de oxaliplatino, respectivamente. Los datos de porcentaje de concentración de oxaliplatino remanente en estas condiciones han oscilado desde un 90% hasta un 109%. En la tabla 5 se presentan los parámetros, error estándar, significación estadística e intervalos de confianza del 95% del modelo de regresión multivariante de doxorrubicina. Estos datos revelan que los factores tiempo transcurrido desde la preparación de la muestra, el día del ensayo, los ciclos de congelación-descongelación o la presencia de oxaliplatino no modifican el porcentaje de concentración remanente de doxorubicina de forma significativa. La figura 1B muestra la evolución temporal de la concentración de doxorrubicina respecto al tiempo, en ausencia y presencia de oxaliplatino.
Porcentaje de concentración remanente de doxorrubicina 15 mg/L (rango) en presencia o ausencia de oxaliplatino 200 mg/L
| Tiempo (minutos) | Estudio de estabilidad | Estudio de congelación-descongelación | Presencia oxaliplatino | |||
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1erdía | 2° día | 3erdía | 1erciclo | 2° ciclo | ||
| 0 | 100,9 (99,9-102,1) | 97,0 (96,0-98,9) | 99,2 (97,9-100,2) | 102,1 (100,5-103,2) | 105,5 (103,5-107,1) | |
| 15 | 100,3 (100,2-100,5) | 93,8 (93,3-94,5) | 98,4 (97,2-99,6) | 103,2 (103,0-103,4) | 104,1 (103,3-104,7) | |
| 30 | 100,8 (100,2-101,1) | 94,9 (93,5-96,1) | 100,7 (100,5-100,9) | 100,8 (99,8-102,0) | 104,1 (102,2-105,1) | |
| 45 | 101,3 (100,4-102,6) | 100,7 (100,4-100,9) | 101,1 (100,4-102,1) | 105,4(104,9-105,6) | 105,6 (-2,0-106,5) | No |
| 60 | 102,5 (100,8-103,6) | 103,1 (102,1-104,2) | 101,5 (100,9-102,6) | 103,9 (102,8-105,4) | 106,7 (104,7-108,3) | |
| 75 | 105,6 (104,4-106,8) | 99,4 (98,6-100,2) | 95,4(94,0-96,9) | 101,9 (99,7-105,3) | 107,7 (-2,0-108,1) | |
| 90 | 105,1 (103,2-106,9) | 97,0 (95,8-98,2) | 96,8 (96,4-97,4) | 102,7 (101,5-104,4) | 104,9 (104,1-106,0) | |
| 120 | 106,6 (106,0-107,6) | 100,6 (100,0-101,1) | 100,0 (98,5-101,2) | 103,9 (103,2-104,4) | 109,4 (108,5-110,8) | |
| 0 | 100,2 (99,8-100,9) | 103,5 (102,7-104,2) | 96,2 (95,6-96,9) | 100,5 (100,2-100,8) | 99,4 (98,8-100,4) | |
| 15 | 101,5 (100,3-102,5) | 103,5 (103,0-103,7) | 98,9 (98,3-99,6) | 91,2 (89,4-93,1) | 103,5 (-2,0-104,0) | |
| 30 | 102,1 (101,0-103,2) | 104,0 (102,9-104,9) | 99,0 (98,4-99,6) | 99,2 (95,3-106,8) | 103,3 (102,5-104,5) | |
| 45 | 104,1 (-2,0-104,3) | 101,5 (100,4-103,2) | 99,3 (96,6-100,9) | 105,3 (104,6-106,0) | 102,9 (101,0-104,3) | Sí |
| 60 | 102,2 (101,7-102,8) | 105,8 (104,0-107,1) | 95,1 (94,7-95,5) | 90,1 (89,5-90,6) | 102,7 (101,2-103,5) | |
| 75 | 102,1 (101,2-103,0) | 104,2 (103,4-105,8) | 94,9 (93,6-96,0) | 102,5 (100,2-103,6) | 99,6 (97,7-101,2) | |
| 90 | 104,8 (102,8-106,3) | 105,7 (104,7-106,6) | 103,0 (102,0-103,8) | 107,0 (106,5-107,7) | 97,6 (97,5-97,9) | |
| 120 | 102,9 (101,4-104,3) | 104,7 (104,4-105,0) | 94,1 (93,0-95,0) | 98,4 (98,3-98,5) | 109,0 (107,9-110,3) | |
Parámetros e intervalos de confianza del 95% del modelo de regresión multivariante de doxorubicina
| Parámetros | Coeficiente | Error estándar | P | Intervalo de confianza 95% | |
|---|---|---|---|---|---|
| Límite inferior | Límite superior | ||||
| Constante | 102,007 | 0,794 | 0,000 | 100,442 | 103,571 |
| t = 15 min | -0,629 | 0,881 | 0,476 | -2,364 | 1,106 |
| t = 30 min | 0,425 | 0,881 | 0,629 | -1,310 | 2,161 |
| t = 45 min | 2,248 | 0,881 | 0,011 | 0,513 | 3,983 |
| t = 60 min | 0,902 | 0,881 | 0,307 | -0,833 | 2,637 |
| t = 75 min | 0,862 | 0,881 | 0,329 | -0,874 | 2,597 |
| t = 90 min | 1,996 | 0,881 | 0,024 | 0,260 | 3,731 |
| t = 120 min | 2,496 | 0,881 | 0,005 | 0,761 | 4,232 |
| Ensayo día 2 | -1,473 | 0,696 | 0,035 | -2,845 | -0,101 |
| Ensayo día 3 | -4,330 | 0,696 | 0,000 | -5,702 | -2,958 |
| Ciclo congelación 1 | -1,560 | 0,696 | 0,026 | -2,932 | -0,188 |
| Ciclo congelación 2 | 1,441 | 0,696 | 0,040 | 0,069 | 2,813 |
| Oxaliplatino | -0,726 | 0,440 | 0,101 | -1,594 | 0,142 |
Oxaliplatino y doxorrubicina son fármacos antineoplásicos eficaces en el tratamiento de la carcinomatosis peritoneal en HIPEC22. Diversos estudios evidencian que la administración intraperitoneal de los antineoplásicos en condiciones de hipertermia tras citorreducción quirúrgica completa, proporciona una mayor supervivencia global de los pacientes respecto a la administración de quimioterapia sistémica convencional22,23. En el contexto de HIPEC, los antineoplásicos permanecen en la cavidad peritoneal a una temperatura entre 42-49° C durante un periodo de 30 a 90 minutos. El vehículo utilizado para la administración es glucosa al 5% puesto que presenta un pH inferior a 5, donde oxaliplatino y doxorrubicina son estables. Otros vehículos como icodextrina o soluciones de diálisis intraperitoneal, con un pH cercano a 7, no son recomendables para administrar doxorrubicina puesto que pueden comprometer su estabilidad14. Sin embargo, las evidencias científicas de la estabilidad de oxaliplatino y doxorrubicina en las condiciones de HIPEC son limitadas.
En el presente trabajo se ha estudiado la estabilidad de oxaliplatino tras hipertermia a concentración de 200 mg/L (disolución A), de doxorrubicina a 15 mg/L (disolución B) y la combinación de ambas (disolución C). El oxaliplatino en glucosa al 5% sería estable durante al menos dos horas a 49° C, dato que complementa al publicado previamente por Elías y col. quienes establecen que oxaliplatino es estable en solución de glucosa al 5% a 46° C durante al menos 4 horas5. El porcentaje de concentración remanente de oxaliplatino en presencia y ausencia de doxorubicina se ha encontrado entre el 90% y el 110% en todos los ensayos realizados, tal como exige la Farmacopea Americana 23 NF1819.
De la misma forma, se ha estudiado la estabilidad de doxorrubicina tras hipertermia en una disolución de doxorrubicina 15 mg/L (disolución B) y en una disolución de oxaliplatino 200 mg/L con doxorrubicina 15 mg/L (disolución C). El envase utilizado para contener estas disoluciones ha sido vidrio, ya que se ha descrito que hasta un 10% de la doxorrubicina puede adsorberse en este tipo de material1, de forma que ese sería el escenario más conservador para la realización del estudio. En todos los casos, el porcentaje de la concentración remanente de doxorrubicina se ha encontrado dentro de los límites establecidos y permite concluir que doxorrubicina diluida en glucosa al 5% sería estable durante al menos dos horas a 49° C, resultados similares a los publicados por Elias y cols.5, pero que difiere con los publicados por otros autores que establecen pérdidas del 10% en estas mismas condiciones, pero transcurridas 40 horas14.
En conclusión, las disoluciones de oxaliplatino 200 mg/L y doxorrubicina 15 mg/L, cuando se administran en monoterapia o combinadas, son estables en glucosa al 5% en envases de vidrio topacio durante al menos 2 horas a una temperatura de 49° C. Asimismo, se ha demostrado que ambas disoluciones son estables tras ser sometidas a dos ciclos de congelación-descongelación posteriores a la hipertermia en un intervalo de dos semanas. Por tanto, en términos de estabilidad físico-química resulta factible la administración concomitante, intraperitoneal y con hipertermia de oxaliplatino y doxorrubicina.
